表1 发酵豆粕的主要营养成分
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成分 |
总能/(kcal/kg) |
粗蛋白质/% |
粗灰分/% |
粗纤维/% |
粗脂肪/% |
总磷/% |
乳酸/% |
益生菌/(CFU/g) |
小分子肽/% |
蛋白酶/(u/g) |
|
含量 |
≥4300 |
≥50 |
≤7.0 |
≤7.0 |
≤3.0 |
≥0.67 |
≥3.0 |
5.0×107 |
≥70 |
≥100 |
蛋白酶活力单位定义：在40℃，pH3.0条件下，1min水解酪素产生相当于1ug酪素的酶量，规定为一个酶活单位（u）。
1.2 试验时间和地点
试验时间：2007年1月5日至2007年2月16日；试验地点：江西农业大学动物营养实验室。
1.3 试验设计
选择1日龄AA肉仔鸡240羽，按公母各半，体重相近的原则，随机分成4个处理，每组6个重复，每个重复10只（4×6×10）。
按玉米-豆粕型设计日粮（表2），对照组为不含鱼粉但添加普通豆粕的肉仔鸡日粮；试验Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ组日粮中分别添加5%、10%、15%的发酵豆粕。
表2 试验饲粮组成和营养成分 %
| 饲粮 | 0～3周龄 | 3～6周龄 | ||||||
| 组成 | 对照组 | Ⅰ | Ⅱ | Ⅲ | 对照组 | Ⅰ | Ⅱ | Ⅲ |
| 玉米 普通豆粕 发酵豆粕 植物油 石粉 磷酸氢钙 食盐 赖氨酸 蛋氨酸 胆碱 预混料 合计 干物质 代谢能/（MJ/kg） 粗蛋白质 粗灰分 钙 总磷 有效磷 赖氨酸 蛋氨酸 |
52.20 39.20 - 4.17 0.96 1.78 0.30 0.02 0.17 0.20 1.00 100.00 87.67 12.55 21.04 6.53 1.01 0.62 0.45 1.10 0.50 |
53.74 32.84 5.00 4.03 0.96 1.78 0.30 0 0.15 0.20 1.00 100.00 88.18 12.55 20.98 6.51 1.05 0.61 0.45 1.10 0.50 |
55.15 26.74 10.00 3.75 0.96 1.78 0.30 0 0.12 0.20 1.00 100.00 88.32 12.55 21.01 6.65 1.00 0.62 0.45 1.10 0.50 |
56.80 20.60 15.00 3.28 0.96 1.78 0.30 0 0.08 0.20 1.00 100.00 88.43 12.55 21.03 6.56 1.04 0.63 0.45 1.10 0.50 |
56.58 35.21 - 4.32 1.04 1.28 0.30 0.06 0.06 0.15 1.00 100.00 87.99 13.15 18.82 5.78 0.90 0.56 0.31 1.00 0.38 |
57.70 29.25 5.00 4.16 1.04 1.28 0.30 0.06 0.06 0.15 1.00 100.00 87.97 13.15 18.79 5.73 0.93 0.57 0.31 1.00 0.38 |
59.15 23.15 10.00 3.81 1.04 1.28 0.30 0.06 0.06 0.15 1.00 100.00 87.82 13.15 18.89 5.62 0.92 0.58 0.31 1.00 0.38 |
60.64 17.03 15.00 3.44 1.04 1.28 0.30 0.06 0.06 0.15 1.00 100.00 87.97 13.15 18.88 5.68 0.91 0.56 0.31 1.00 0.38 |
注：1）粗蛋白质、粗灰分、钙、总磷为实测值，其他指标为根据《中国饲料数据库-中国饲料成分及营养价值》（2004年修订版）的计算值。
2）预混料可为每千克配合饲料提供：VA 5 500 IU；VD3 650 IU；VE 35 mg；VK3 2.5 mg；核黄素 7.5 mg；泛酸 18.6 mg；尼克酸 45.0 mg；生物素 0.25 mg；VB12 100μg；锰 180 mg；铁 240 mg；锌 120 mg；铜 25 mg；碘 0.3 mg；硒 0.5 mg。
1.4 饲养管理
1.4.1 试验鸡4层立式笼养，采用24h光照，第1周控温32℃，以后每周下降2℃，第1周饮水中加入电解多维和2‰的KMnO4，饲喂粉料，自由采食和饮水，勤通风，每3d清粪1次。
1.4.2 免疫程序为7日龄接种鸡新支二联苗，14日龄接种鸡法氏囊苗。
1.5 测定方法及指标
饲养结束后，将鸡宰杀，剖开腹腔，分离十二指肠、空肠、回肠，挤出消化道内容物，用生理盐水冲洗净残余物，滤纸吸干消化器官残余水分，剪取肉仔鸡十二指肠中段、空肠前段（前1/4处）和回肠中段等部位的肠道组织2cm左右，用生理盐水冲洗净内容物，置于10%甲醛磷酸缓冲液中固定（37%～40%福尔马林100mL：NaH2PO4·H2O 6.5g：Na2HPO4 4.0g 加水定容至1 000mL），用于肠黏膜形态指标的测定。将固定的标本经梯度酒精（50%、60%、75%、85%、95%、100%、100%）脱水→透明（无水酒精：二甲苯为1：3、2：3、二甲苯）→浸蜡→包理等处理后，在室温下切成5 μm厚的切片，最后用苏木精-伊红染色法（HE）染色。在低倍镜下观测切片，选择典型视野，用Leica Qwin图象进行系统分析，每个样品观察10个非连续性5μm的纵切片，每张切片测量5个最长肠绒毛高度、最深隐窝深度和最厚肠壁厚度。
绒毛长度：游离于肠腔内的部分（绒毛顶端至绒毛基部）；
隐窝深度：肠腺底部至两绒毛之间基部开口处的距离；
肠壁厚度：肠外部至肌层与粘膜下层交接处的距离（浆膜厚度加肌层厚度）。
1.6 试验数据处理
采用spssl2.0统计软件的One-Way过程对试验数据进行统计分析，采用Duncan＇s法进行多重比较。试验结果数据以“平均值±标准差”形式表示。
表3 各试验组对肉鸡肠黏膜组织形态的影响 um、%
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处理 |
对照组 |
Ⅰ组 |
Ⅱ组 <相关文章
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